دوره 7، شماره 21 - ( تابستان 1403 )
جلد 7 شماره 21 صفحات 1269-1248 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Behzadpour D, Biniaz R, Madhoush K, Kaviani B. Isolation and Determination of Antibiotic Resistance Pattern of Bacterial Agents of Subclinical Mastitis in Cows of Masal City, Guilan. J Altern Vet Med 2024; 7 (21) :1248-1269
URL: http://joavm.kazerun.iau.ir/article-1-189-fa.html
URL: http://joavm.kazerun.iau.ir/article-1-189-fa.html
بهزادپور داریوش، بی نیاز رضا، مدهوش کاوه، کاویانی بهزاد. جداسازی و تعیین الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی عوامل باکتریایی ورم پستان تحت بالینی در گاوهای شهر ماسال، گیلان. مجله طب دامپزشکی جایگزین. 1403; 7 (21) :1248-1269
داریوش بهزادپور*1 
، رضا بی نیاز2 ، کاوه مدهوش3 ، بهزاد کاویانی4
، رضا بی نیاز2 ، کاوه مدهوش3 ، بهزاد کاویانی4
1- گروه دامپزشکی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران ، dbehzadpour@gmail.com
2- گروه دامپزشکی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
3- مدیر فنی آزمایشگاه سامانه پایش سلامت، رشت، ایران
4- گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
2- گروه دامپزشکی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
3- مدیر فنی آزمایشگاه سامانه پایش سلامت، رشت، ایران
4- گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
چکیده: (135 مشاهده)
زمینه و هدف: ورم پستان پرهزینه‌ترین بیماری تهدید کننده صنعت پرورش گاو می‌باشد. تشخیص زود هنگام موارد ورم پستان بالینی بهترین گزینه برای جلوگیری از ابتلا گاوها به ورم پستان است. هدف از پژوهش حاضر، بررسی شیوع و تعیین الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی عوامل باکتریایی ایجاد کننده ورم پستان تحت بالینی در گاوهای شیری ماسال بود.
مواد و روش‌ها: در مجموع، ۱۰۰ نمونه شیر خام از گاوداری‌های شهرستان ماسال جمع‌آوری شد. نمونه‌ها با استفاده از آزمون ورم پستان کالیفرنیایی مورد بررسی قرار گرفتند و امتیازدهی شدند. نمونه‌های مثبت جمع‌آوری شده در هر نوبت دوشش، در شرایط انجماد به آزمایشگاه منتقل شده و کشت میکروبی و آنتی‌بیوگرام روی آنها انجام گرفت. کلیه داده‌ها با استفاده از نرم‌افزار SPSS نسخه 25 مورد آنالیز آماری قرار گرفت.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که شیوع ورم پستان تحت بالینی حدود 67 درصد بود. توزیع شایع‌ترین باکتری‌های جدا شده از نمونه‌های شیر عبارت بود از: استافیلوکوکوس اورئوس (Staphylococcus aureus) با 26/9 درصد، اشرشیا کلی (Escherichia coli) با 16/4 درصد، استافیلوکوک کواگولاز منفی (coagulase negative Staphyllococci) با 10/4 درصد، استرپتوکوکوس آگالاکتیه (Streptococcus agalactiae) با 10/4 درصد، استرپتوکوکوس دیس‌آگالاکتیه (Streptococcus dysgalactiae) با 9 درصد و انتروباکتر (Enterobacter) با 7/5 درصد. همچنین، 71/4 درصد از ایزوله‌های استافیلوکوک کواگولاز منفی و 66/7 درصد از جدایه‌های استافیلوکوکوس اورئوس به پنی‌سیلین مقاوم بودند. به طور کلی، همه عوامل باکتریایی جدا شده از نمونه‌های مورد مطالعه به سیپروفلوکسازین حساس بودند.
نتیجه‌گیری: در مجموع، شیر تولید شده از گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی، میکروب‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک را به انسان منتقل می‌کند و منجر به شیوع میکروب‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک در انسان می‌گردد. بنابراین، پیشگیری و درمان ورم پستان تحت بالینی در گاوها به مطالعه و توجه بیشتری نیاز دارد.
مواد و روش‌ها: در مجموع، ۱۰۰ نمونه شیر خام از گاوداری‌های شهرستان ماسال جمع‌آوری شد. نمونه‌ها با استفاده از آزمون ورم پستان کالیفرنیایی مورد بررسی قرار گرفتند و امتیازدهی شدند. نمونه‌های مثبت جمع‌آوری شده در هر نوبت دوشش، در شرایط انجماد به آزمایشگاه منتقل شده و کشت میکروبی و آنتی‌بیوگرام روی آنها انجام گرفت. کلیه داده‌ها با استفاده از نرم‌افزار SPSS نسخه 25 مورد آنالیز آماری قرار گرفت.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که شیوع ورم پستان تحت بالینی حدود 67 درصد بود. توزیع شایع‌ترین باکتری‌های جدا شده از نمونه‌های شیر عبارت بود از: استافیلوکوکوس اورئوس (Staphylococcus aureus) با 26/9 درصد، اشرشیا کلی (Escherichia coli) با 16/4 درصد، استافیلوکوک کواگولاز منفی (coagulase negative Staphyllococci) با 10/4 درصد، استرپتوکوکوس آگالاکتیه (Streptococcus agalactiae) با 10/4 درصد، استرپتوکوکوس دیس‌آگالاکتیه (Streptococcus dysgalactiae) با 9 درصد و انتروباکتر (Enterobacter) با 7/5 درصد. همچنین، 71/4 درصد از ایزوله‌های استافیلوکوک کواگولاز منفی و 66/7 درصد از جدایه‌های استافیلوکوکوس اورئوس به پنی‌سیلین مقاوم بودند. به طور کلی، همه عوامل باکتریایی جدا شده از نمونه‌های مورد مطالعه به سیپروفلوکسازین حساس بودند.
نتیجه‌گیری: در مجموع، شیر تولید شده از گاوهای مبتلا به ورم پستان تحت بالینی، میکروب‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک را به انسان منتقل می‌کند و منجر به شیوع میکروب‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک در انسان می‌گردد. بنابراین، پیشگیری و درمان ورم پستان تحت بالینی در گاوها به مطالعه و توجه بیشتری نیاز دارد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
میکروبیولوژی
دریافت: 1403/3/14 | پذیرش: 1403/6/7 | انتشار: 1403/6/10
دریافت: 1403/3/14 | پذیرش: 1403/6/7 | انتشار: 1403/6/10
فهرست منابع
1. Abdel-Rady A. and Sayed M. Epidemiological studies on subclinical mastitis in dairy cows in assiut governorate. Veterin World, 2009; 2 (10): 373-380. [DOI:10.5455/vetworld.2009.373-380]
2. Abed A.H., Menshawy A.M.S., Zeinhom M.M.A., Hossain D., Khalifa E., Wareth G. and Awad MF. Subclinical mastitis in selected bovine dairy herds in North Upper Egypt: Assessment of prevalence, causative bacterial pathogens, antimicrobial resistance and virulence-associated genes. Microorganisms, 2021; 9 (6): 1175. [DOI:10.3390/microorganisms9061175] [PMID] []
3. Anakalo S.A., Gathoni Tura G. and Mwangi M. Prevalence of bovine mastitis amongst small holder dairy herds in keya. Isreal J Vet Med, 2004; 80: 307-312.
4. Argaw A. Review on epidemiology of clinical and subclinical mastitis on dairy cows. Food Sci Qual Manag, 2016; 52: 56-65.
5. Bereda A., Yilma Z., Eshetu M. and Yousuf MK. Hygienic practices, microbial quality and safety of raw cow's milk and traditional fermented milk (Irgo) in selected areas of Ethiopian Central Highlands. East Afr J Veterin Animal Sci, 2018; 2 (1): 17-26.
6. Bradley AJ., Breen JE., Payne B., White V. and Green MJ. An investigation of the efficacy of a polyvalent mastitis vaccine using different vaccination regimens under field conditions in the United Kingdom. J Dairy Sci, 2015; 98: 1706-1720. [DOI:10.3168/jds.2014-8332] [PMID]
7. Botrel MA., Haenni M., Morignat E., Sulpice P., Madec JY. and Calavas D. Distribution and antimicrobial resistance of clinical and subclinical mastitis pathogens in dairy cows in Rhone-Alpes, France. Foodborne Pathog Dis, 2010; 7 (5): 479-487. [DOI:10.1089/fpd.2009.0425] [PMID]
8. Busato A., Trachsel P., Schällibaum M. and Blum J.W. Udder health and risk factors for subclinical mastitis in organic dairy farms in Switzerland. Prev Vet Med, 2000; 44: 205-220. [DOI:10.1016/S0167-5877(00)00104-5] [PMID]
9. Byarugaba DK., Nakavuma JL., Vaarst M. and Laker C. Mastitis occurrence and constraints to mastitis controlling smallholder dairy farming systems in Uganda. Livestock Res Rural Dev, 2008; 20 (5): Retrieved September 29, 2021.
10. Contreras GA. and Rodriguez JM. Mastitis: Comparative etiology and epidemiology. J Mammary Gland Biol Neoplasia, 2011; 16 (4): 339-356. [DOI:10.1007/s10911-011-9234-0] [PMID]
11. Costa GM. Mamite bovina em rebanhos leiteiros da região sul do Estado de Minas Gerais. Tese de Doutorado, Escola de Veterinária, Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte, MG. 2008; PP: 123.
12. Das D., Panda SK., Kundu AK., Jena B., Das BC. and Sahu RK. Haematological and metabolic profile test of mastitis affected bovines in Odisha. 2018; 6: 3022-3024.
13. Esrafili S., Ghiami Raad M. and Mousavi Ara SA. Identification and determination of antibiotic resistance pattern of bacterial agents that causes bovine clinical mastitis
14. in Tabriz. New Find Veter Med, 2023; 6 (2): 74-82.
15. Fagiolo A. and Lai O. Mastitis in buffalo. Ital J Anim Sci, 2007; 6: 200-206. [DOI:10.4081/ijas.2007.s2.200]
16. Farajpour M., Sadeghi ZM. and Ghiamirad M. Prevalence and antibiotic susceptibility of Staphylococcus aureus in raw milks of Saqez. J Food Hygiene, 2015; 5 (3): 39-48. (In Persian)
17. Firouzi R., Rajaian H., Tabaee I. and Saeedzadeh A. In vitro antibacterial effects of marbofloxacin on microorganisms causing mastitis in cows. J Veter Res, 2010; 65 (1): 51-55. (In Persian)
18. Goli M., Ezzatpanah H., Ghavami M., Chamani M. and Nedaeinia R. Multiplex polymerase chain reaction as a mastitis screening test for major pathogens in dairy cow farms at different size scales and in several parities. J Res Agric Sci, 2012; 8: 23-33.
19. Hetzel M., Bonfoh B., Farah Z., Traoré M., Simbé CF., Alfaroukh IO., et al. Diarrhoea, vomiting and the role of milk consumption: Perceived and identified risk in Bamako (Mali). Trop Med Intl Health, 2004; 9 (10): 1132-1138. [DOI:10.1111/j.1365-3156.2004.01306.x] [PMID]
20. Handayani RS., Siahaan S. and Herman MJ. Antimicrobial resistance and its control policy implementation in hospital in Indonesia. J Penelitian dan Pengembangan Pelayanan Kesehatan, 2017; 1: 131-140. [DOI:10.22435/jpppk.v1i2.537]
21. Harjanti DW. and Sambodho P. Effects of mastitis on milk production and composition in dairy cows. Earth Environ Sci, 2020; 518: 012032. [DOI:10.1088/1755-1315/518/1/012032]
22. Hawari AD. and Al-Dabbas. Prevalence and distribution of mastitis pathogens and their resistance against antimicrobial agents in dairy cows in Jordan. Am J Anim Vet Sci, 2008; 3 (1): 36-39. [DOI:10.3844/ajavsp.2008.36.39]
23. Kalmus P., Aasmae B., Karssin A., Orro T. and Kask K. Udder pathogens and their resistance to antimicrobial agents in dairy cows in Estonia. Acta Vet Scand, 2011; 53 (1): 4. [DOI:10.1186/1751-0147-53-4] [PMID] []
24. Karimuribo ED., Fitzpatrick JL., Bell CE., Swai ES., Kambarage DM. and Ogden NH. Clinical and subclinical mastitis in smallholder dairy farms in Tanzania: risk, intervention and knowledge transfer. Prev Vet Med, 2005; 74 (1): 84-98. [DOI:10.1016/j.prevetmed.2006.01.009] [PMID]
25. Kumari T., Bhakat C. and Choudhary RK. A review on sub clinical mastitis in dairy cow. Int J Pure App Biosci, 6 (2): 1291-1299.
26. Luo Y., Kong Z., Yang B., He F., Huan C., Li J. and Yi K. Relationship between microflora changes and mammary lipid metabolism in dairy cows with mastitis. Animals, 2023; 13: 2773. [DOI:10.3390/ani13172773] [PMID] []
27. Langer A., Sharma S., Sharma NK. and Nauriyal DS. Comparative efficacy of different mastitis markers for diagnosis of sub-clinical mastitis in cows. Int J Appl Sci Biotechnol, 2014; 2 (2): 121-125. [DOI:10.3126/ijasbt.v2i2.10191]
28. Langoni H., Domingues PF., Molero Filho JR. and Baldini S. 2001. Etiologia e sensibilidade bacteriana da mastite subclínica em búfalos (Bubalus bubalis). Ars Vet, 2001; 17: 213-217.
29. Morales-Ubaldo AL., Rivero-Perez N., Valladares-Carranza B., Velázquez-Ordoñez V., Delgadillo-Ruiz L. and Zaragoza-Bastida A. Bovine mastitis, a worldwide impact disease: Prevalence, antimicrobial resistance, and viable alternative approaches. Veter Animal Sci, 2023; 21: 100306. [DOI:10.1016/j.vas.2023.100306] [PMID] []
30. Mirzaei H., Farhoudi H., Tavassoli H., Farajli M. and Monadi A. Presence and antimicrobial susceptibility of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in raw and pasteurized milk and ice cream in Tabriz by culture and PCR techniques. Afr J Microbiol Res, 2012; 6 (32): 6224-6229. [DOI:10.5897/AJMR12.1701]
31. Moslemipur F., Mostafaloo Y. and Khanahmadi A. Survey of conformity between organoleptic and microbial culture techniques to diagnose cows' mastitis and antibiogram test in milk of industrial and traditional herds. Animal Sci Res, 2016; 26 (1): 51-62. (In Persian).
32. Panchal J., Patel A., Patel S. and Goswami D. Understanding mastitis: Microbiome, control strategies, and prevalence - A comprehensive review. Microb Pathog, 2024; 187: 106533. [DOI:10.1016/j.micpath.2023.106533] [PMID]
33. Pandey V., Aditi P., Gupta S.K., Neelesh Sh. and Deepak Sh. Impact of subclinical mastitis on blood biochemistry of dairy cows. The Ind J Animal Sci 2012; 82 (5): 477-478.
34. Qayyum A., Khan JA., Hussain R., Avais M., Ahmad N. and Khan MS. Investigation of milk and blood serum biochemical profile as an indicator of subclinical mastitis in Cholistani cow. Pak Vet J, 2016; 36: 275-279.
35. Rahchamani R., Noori S. and Bayat Kouhsar J. Antibacterial effect of essential oils of peppermint and pennyroyal on major bovine mastitis bacteria. New Find Veter Med, 2023; 6 (1): 64-75.
36. Saleki K. and Moradi H. (2013). Bacterial agents of mastitis in dairy cow farms in Ilam city. J Ilam Univ Med Sci, 2013; 20 (4): 88-95. (In Persian)
37. Sharifi A., Sobhani K., Farzinpour A. and Vaziry A. Evaluation of antibiotic resistance of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis. Veter Res Biol Prod, 2022; 4 (4): 68-73.
38. Shahzad W., Altaf M., Ahmad M., Munir R., Amin M.T., Khan M.S., et al. Prevalence and molecular diagnosis of Staphylococcus aureus subclinical mastitis in lactating Nili-Ravi Buffaloes (Bubalus bubalis) at Livestock Experiment Station, Bahadurnagar, Okara, Pakistan. Buffalo Bull, 2013; 32: 1041-1045.
39. Touza-Otero L., Landin M. and Diaz-Rodriguez P. Fighting antibiotic resistance in the local management of bovine mastitis. Biomed Pharmacother, 2024; 170: 115967. [DOI:10.1016/j.biopha.2023.115967] [PMID]
40. Vásquez-García A., dos Santos Silva T., de AlmeidaQueiroz SR., Godoy SHS.,
41. Fernandes AM., Sousa RLM., et al. Species identification and antimicrobial susceptibility profile of bacteria causing subclinical mastitis in buffalo. Pesq Vet Bras, 2017; 37 (5): 447-452. [DOI:10.1590/s0100-736x2017000500004]
42. Vojgani M., Peyghambari S. and Hakimi H. Detection of common bacteria implicated in bovine mastitis in bulk tank milk by polymerase chain reaction. J Vet Res, 2008; 63 (1): 69-73.
43. Widianingrum DC., Noviandi CT. and Salasia SIO. Antibacterial and immunomodulatory activities of Virgin Coconut Oil (VCO) against Staphylococcus aureus. Heliyon 2019; 5: 1-5. [DOI:10.1016/j.heliyon.2019.e02612] [PMID] []
44. Widianingrum DC., Windria S. and Salasia SIO. Antibiotic resistance and methicillin resistant Staphylococcus aureus isolated from bovine, crossbred Etawa goat and human. Asian J Anim Vet Adv, 2016; 11: 122-129. [DOI:10.3923/ajava.2016.122.129]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |